Ingénieur de recherche

Projet de recherche

La maladie du court-noué de la vigne est l’une des principales maladies à virus de la vigne qui altère la production du raisin et la longévité des vignobles. Le Grapevine fanleaf virus (GFLV) et dans une moindre mesure l’Arabis mosaic virus (ArMV) sont les deux Nepovirus majoritairement responsables de cette maladie en France et en Europe. Ils sont transmis de vigne à vigne spécifiquement par deux espèces différentes de nématodes ectoparasites, le GFLV par Xiphinema index et l’ArMV par X. diversicaudatum, lors de l’alimentation au niveau des racines de vignes. Aujourd’hui il n’y a aucune solution durable pour lutter contre cette maladie endémique du vignoble.

La connaissance de la biologie des virus, notamment, la nature des interactions virus–plante et virus–vecteurs constituent des sources potentielles d’innovations technologiques pour lutter contre ces virus. Ainsi dans notre équipe, nous cherchons à comprendre les bases moléculaires de la spécificité de la transmission des particules virales par leur vecteur en utilisant comme modèles les couples GFLV/X. index et ArMV/X. diversicaudatum. Pour atteindre ces objectifs, nous développons de nouvelles technologies basées sur l’utilisation des nanobodies dirigés contre le GFLV et l’ArMV qui permettent d’améliorer la détection du virus dans les plantes et dans les vecteurs mais également de générer de nouvelles sources de résistance à ces virus.

Parcours

  • 1987-1990 : Doctorat de l’Université Louis Pasteur, Strasbourg I. Spécialité Biologie Moléculaire et Cellulaire. IBMP-CNRS, Département de virologie, France. « Etude de l’expression in vitro et in vivo des RNA génomiques du Tomato black ring virus (TBRV) ».
  • 1990 : Scottish crop research institute, Departement de virologie, Invergowerie, Ecosse. CDD Post-doctorat : « Expression du génome du Tomato black ring virus (TBRV) dans les protoplastes de tabac »
  • 1991-1993 : Biocem, Groupe Limagrain, Aubière. France. CDD Post-doctorat : « Expression in planta de la protéine de mouvement du Cucumber mosaic virus (CMV) et étude de son interaction avec les plasmodesmes »
  • Depuis 1993. Inra Grand est Centre de Colmar.-UMR 1131/Unistra  « Santé de la vigne et qualité du vin. Ingénieur de Recherche dans l’équipe Virologie et Vection : Responsable du projet « Biologie du de la transmission du Grapevine fanleaf virus (GFLV) par son vecteur naturel Xiphinema index ».
  • 2012 : Habilitation à Diriger des Recherches. Université de Strasbourg. Spécialité Biologie Moléculaire et Cellulaire.

Projets financés

Publications représentatives

  • Hemmer C., Djennane S., Ackerer L., Hleibieh K., Marmonier A., Gersch S., Garcia S., Vigne E., Komar V., Perrin M., Gertz C., Belval L., Berthold F., Monsion B., Schmitt-Keichinger C., Lemaire O., Lorber B., Gutiérrez C., Muyldermans S., Demangeat G., and Ritzenthaler C. (2018). Nanobody-mediated resistance to Grapevine fanleaf virus in plants. Plant Biotechnology Journal, doi: https://doi.org/10.1111/pbi.12819.
  • Andret-Link, P., Marmonier, A., Belval, L., Hleibieh, K., Ritzenthaler, C. and Demangeat, G. (2017) Nematode vectors for grapevine viruses: biology, behavior and mechanisms of virus transmission. In Grapevine Viruses: Molecular Biology, Diagnostics and Management (Meng, B., Martelli, G.P., Fuchs, M. and Golino, D. eds), pp. 505–529. Switzerland: Springer International Publishing AG.
  • Hily J.M., Demaneche S., Poulicard N., Tanniere M., Djennane S., Beuve M., Vigne E., Demangeat G., Komar V., Gertz C., Marmonier A., Hemmer C., Vigneron S., Marais A., Candresse T., Simonet P. and Lemaire O. (2017). Metagenomic-based impact study of transgenic grapevine rootstock on its associated virome and soil bacteriome. Plant Biotechnology Journal, doi:https://doi.org/10.1111/pbi.12761
  • Belval L, Hemmer C, Sauter C, Reinbold C, Fauny JD, Berthold F, Ackerer L, Schmitt-Keichinger C, Lemaire O, Demangeat G, Ritzenthaler C (2016). Display of whole proteins on inner and outer surfaces of Grapevine fanleaf virus-like particles. Plant Biotechnology Journal DOI: 10.1111/pbi.12582. 14, pp. 2288–2299.
  • MacFarlane S., Inga Zasada I., Lemaire O., and Demangeat G. (2016). Nematode-Borne Plant Viruses Vector-Mediated Transmission of Plant Pathogens Pages 365-378. http://dx.doi.org/10.1094/9780890545355.026
  • Lai-Kee-Him J, Schellenberger P, Dumas C, Richard E, Trapani S, Komar V, Demangeat G, Ritzenthaler C, Bron P (2013) The backbone model of the Arabis mosaic virus reveals new insights into functional domains of Nepovirus capsid. Journal of Structural Biology, 182(1), 1-9.
  • Pensec F, Marmonier A, Marchal A, Gersch S, Nassr N, Chong J, Henry M, Demangeat G, Bertsch C (2013). Gypsophila paniculata root saponins as an environmentally safe treatment against two nematodes, natural vectors of grapevine fanleaf degeneration. Australian Journal of Grape and Wine Research, 19, 439-445.
  • Villate L., Morin E., Demangeat G.,van Helden, M., Esmenjaud D.(2012). Control of Xiphinema index populations by fallow plants under greenhouse and field conditions. Phytopathology.  102: 627-634.
  • Schellenberger P., Lorber B., Sauter C., Bron P., Trapani S., Bergdoll M., Marmonier A., Lemaire O., Demangeat G., Ritzenthaler C. (2011). Structural Insights into Viral Determinants of Nematode Mediated Grapevine fanleaf virus Transmission. PloS Pathogens.( e1002034).
  • Schellenberger P., Demangeat G., Sauter C., Bergdoll M., Lemaire O., Ritzenthaler C., Oliéric V., Lorber B. (2011). Strategies for the crystallization of viruses: Using phase diagrams and gels to produced 3D crystals of grapevine fanleaf virus virus. Journal of Structural Biology.  174: 344-351.

Collaborations